intermittierendes höhendtraining
Logo Doctaris Plus

Intermittierendes Höhentraining in der Mitochondrialen Medizin

Percy Marshall_Doctaris
Dr. med.
Leipzig, Deutschland
Andrea Gartenbach
Dr. med.
Berlin, Deutschland

Intermittierendes Hypoxie Training (IHT) hat sich zu einem festen Bestandteil vieler Arztpraxen entwickelt. Es wird für seine gesundheitsfördernden Effekte sowohl zur adjuvanten Therapie chronischer Erkrankungen als auch als essenzieller Bestandteil der Präventionsmedizin geschätzt. Ziel dabei ist die unspezifische Erhöhung der körperlichen Widerstandsfähigkeit durch gezielte Mitophagie geschädigter Mitochondrien sowie Optimierung der zellulären Atmung.

Die oxidative Schädigung mitochondrialer DNA (mtDNA), die zu der sogenannten mitochondrialen Dysfunktion führt, ist einer der Hauptfaktoren menschlichen Alterns und der Entstehung chronischer Erkrankungen [1]. Eine kontinuierliche Erneuerung der Mitochondrien (Mitophagie und Mitogenese) kann den oxidativen Stress verringern, die Effizienz des oxidativen Stoffwechsels erhöhen, den Alterungsprozess verlangsamen und die Entwicklung altersbedingter Krankheiten verhindern und/oder verzögern [2]. Zur Entwicklung der mitochondrialen Dysfunktion tragen vor allem hyperkalorische, prozessierte Nahrung, eine chronisch inflammatorische Grundsituation, chronisch metabolische Azidose und Regulationsstörungen des Autonomen Vegetativen Nervensystems bei [3, 4]. Dies führt zu einer Dysregulation des Gesamtsystems mit einer unzureichenden Energieproduktion trotz ausreichend vorhandenen Sauerstoffs (Warburg-Syndrom) [5].

Inhalte

  • 1. Molekulare Mechanismen
  • 2. IHHT in der Therapie von Krankheiten
  • 3. HRV, ANS und Regeneration
  • 4. Einsatz des IHHT bei Leistungsträgern
  • 5. Zusammenfassung
  • 6. Literatur­verzeichnis

DIESER INHALT IST GESCHÜTZT UND NUR FÜR MEDIZINISCHE FACHKREISE ZUGÄNGLICH. BITTE LOGGEN SIE SICH MIT IHREN ZUGANGSDATEN EIN!

NOCH KEINEN FACHLOGIN? Einfach kostenlos registrieren und Zugang erhalten!

  1. Picard, M.; Turnbull, D.M. Linking the Metabolic State and Mitochondrial DNA in Chronic Disease, Health, and Aging. Diabetes 2013, 62, 672–678, doi:10.2337/db12-1203.
  2. Marshall, R.P.; Droste, J.-N.; Giessing, J.; Kreider, R.B. Role of Creatine Supplementation in Conditions Involving Mitochondrial Dysfunction: A Narrative Review. Nutrients 2022, 14, 529.
  3. Diaz-Vegas, A.; Sanchez-Aguilera, P.; Krycer, J.R.; Morales, P.E.; Monsalves-Alvarez, M.; Cifuentes, M.; Rothermel, B.A.; Lavandero, S. Is Mitochondrial Dysfunction a Common Root of Noncommunicable Chronic Diseases? Endocrine Reviews 2020, 41, 491–517, doi:10.1210/endrev/bnaa005.
  4. Devic, S. Warburg Effect - a Consequence or the Cause of Carcinogenesis? J Cancer 2016, 7, 817–822, doi:10.7150/jca.14274.
  5. Vander Heiden, M.G.; Cantley, L.C.; Thompson, C.B. Understanding the Warburg Effect: The Metabolic Requirements of Cell Proliferation. Science 2009, 324, 1029–1033, doi:10.1126/science.1160809.
  6. Droste, J.-N. Umweltbedingungen. In Sportwissenschaft; Elsevier, 2022; pp. 261–269.
  7. Viscor, G.; Ricart, A.; Pages, T.; Corral, L.; Javierre, C.F.; Ventura, J.L. Intermittent Hypoxia for Obstructive Sleep Apnea? High Altitude Medicine & Biology 2014, 15, 520–521.
  8. Canouï-Poitrine, F.; Veerabudun, K.; Larmignat, P.; Letournel, M.; Bastuji-Garin, S.; Richalet, J.-P. Risk Prediction Score for Severe High Altitude Illness: A Cohort Study. PLoS One 2014, 9, e100642.
  9. Richalet, J.-P.; Lhuissier, F.J. Aging, Tolerance to High Altitude, and Cardiorespiratory Response to Hypoxia. High altitude medicine & biology 2015, 16, 117–124.
  10. Viscor, G.; Torrella, J.R.; Corral, L.; Ricart, A.; Javierre, C.; Pages, T.; Ventura, J.L. Physiological and Biological Responses to Short-Term Intermittent Hypobaric Hypoxia Exposure: From Sports and Mountain Medicine to New Biomedical Applications. Frontiers in Physiology 2018, 9.
  11. Voronina, T.; Grechko, N.; Shikhlyarova, A.; Bobkova, N. Intermittent Hypoxic Training as an Effective Method of Activation Therapy. Cardiometry 2017.
  12. Faiss, R.; Girard, O.; Millet, G.P. Advancing Hypoxic Training in Team Sports: From Intermittent Hypoxic Training to Repeated Sprint Training in Hypoxia. British journal of sports medicine 2013, 47, i45–i50.
  13. Sanchez, A.M.J.; Borrani, F. Effects of Intermittent Hypoxic Training Performed at High Hypoxia Level on Exercise Performance in Highly Trained Runners. Journal of Sports Sciences 2018, 36, 2045–2052, doi:10.1080/02640414.2018.1434747.
  14. Susta, D.; Dudnik, E.; Glazachev, O.S. A Programme Based on Repeated Hypoxia-Hyperoxia Exposure and Light Exercise Enhances Performance in Athletes with Overtraining Syndrome: A Pilot Study. Clin Physiol Funct Imaging 2017, 37, 276–281, doi:10.1111/cpf.12296.
  15. Lukyanova, L.D.; Dudchenko, A.V.; Germanova, E.L.; Tsybina, T.A.; Kapaladze, R.A.; Ehrenbourg, I.V.; Tkatchouk, E.N. Mitochondrial Signaling in Formation of Body Resistance to Hypoxia. In Intermittent hypoxia: from molecular mechanisms to clinical applications; 2011; pp. 391–417.
  16. Semenza, G.L. Regulation of Oxygen Homeostasis by Hypoxia-Inducible Factor 1. Physiology (Bethesda) 2009, 24, 97–106, doi:10.1152/physiol.00045.2008.
  17. Fukuda, R.; Zhang, H.; Kim, J.; Shimoda, L.; Dang, C.V.; Semenza, G.L. HIF-1 Regulates Cytochrome Oxidase Subunits to Optimize Efficiency of Respiration in Hypoxic Cells. Cell 2007, 129, 111–122, doi:10.1016/j.cell.2007.01.047.
  18. Ristow, M. Unraveling the Truth about Antioxidants: Mitohormesis Explains ROS-Induced Health Benefits. Nat Med 2014, 20, 709–711, doi:10.1038/nm.3624.
  19. Jiang, B.H.; Semenza, G.L.; Bauer, C.; Marti, H.H. Hypoxia-Inducible Factor 1 Levels Vary Exponentially over a Physiologically Relevant Range of O2 Tension. Am J Physiol 1996, 271, C1172-1180, doi:10.1152/ajpcell.1996.271.4.C1172.
  20. Wang, G.L.; Jiang, B.H.; Rue, E.A.; Semenza, G.L. Hypoxia-Inducible Factor 1 Is a Basic-Helix-Loop-Helix-PAS Heterodimer Regulated by Cellular O2 Tension. Proc Natl Acad Sci U S A 1995, 92, 5510–5514, doi:10.1073/pnas.92.12.5510.
  21. Semenza, G.L. Hydroxylation of HIF-1: Oxygen Sensing at the Molecular Level. Physiology 2004, 19, 176–182.
  22. Yu, A.Y.; Frid, M.G.; Shimoda, L.A.; Wiener, C.M.; Stenmark, K.; Semenza, G.L. Temporal, Spatial, and Oxygen-Regulated Expression of Hypoxia-Inducible Factor-1 in the Lung. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology 1998, 275, L818–L826.
  23. Zhao, Y.-C.; Guo, W.; Gao, B.-H. Hypoxic Training Upregulates Mitochondrial Turnover and Angiogenesis of Skeletal Muscle in Mice. Life Sci 2022, 291, 119340, doi:10.1016/j.lfs.2021.119340.
  24. Tsai, H.-H.; Chang, S.-C.; Chou, C.-H.; Weng, T.-P.; Hsu, C.-C.; Wang, J.-S. Exercise Training Alleviates Hypoxia-Induced Mitochondrial Dysfunction in the Lymphocytes of Sedentary Males. Sci Rep 2016, 6, 35170, doi:10.1038/srep35170.
  25. Kim, J.; Tchernyshyov, I.; Semenza, G.L.; Dang, C.V. HIF-1-Mediated Expression of Pyruvate Dehydrogenase Kinase: A Metabolic Switch Required for Cellular Adaptation to Hypoxia. Cell Metab 2006, 3, 177–185, doi:10.1016/j.cmet.2006.02.002.
  26. Levine, B.D.; Stray-Gundersen, J. Dose-Response of Altitude Training: How Much Altitude Is Enough? Hypoxia and Exercise 2006, 233–247.
  27. Wilber, R.L.; Stray-Gundersen, J.; Levine, B.D. Effect of Hypoxic “Dose” on Physiological Responses and Sea-Level Performance. Medicine and science in sports and exercise 2007, 39, 1590–1599.
  28. Rozova, K.; Mankovska, I. The Effect of Intermittent Hypoxic Training on Lung and Heart Tissues of Healthy Rats. Pneumonol Alergol Pol 2012, 80, 296–300.
  29. Manukhina, E.B.; Downey, H.F.; Shi, X.; Mallet, R.T. Intermittent Hypoxia Training Protects Cerebrovascular Function in Alzheimer’s Disease. Experimental Biology and Medicine 2016, 241, 1351–1363.
  30. Davidge, S.T.; Baker, P.N.; McLaughlin, M.K.; Roberts, J.M. Nitric Oxide Produced by Endothelial Cells Increases Production of Eicosanoids through Activation of Prostaglandin H Synthase. Circulation research 1995, 77, 274–283.
  31. Manukhina, E.B.; Downey, H.F.; Mallet, R.T. Role of Nitric Oxide in Cardiovascular Adaptation to Intermittent Hypoxia. Experimental Biology and Medicine 2006, 231, 343–365.
  32. Rey, S.; Semenza, G.L. Hypoxia-Inducible Factor-1-Dependent Mechanisms of Vascularization and Vascular Remodelling. Cardiovascular research 2010, 86, 236–242.
  33. Li, X.; Zhao, H.; Wu, Y.; Zhang, S.; Zhao, X.; Zhang, Y.; Wang, J.; Wang, J.; Liu, H. Up-Regulation of Hypoxia-Inducible Factor-1α Enhanced the Cardioprotective Effects of Ischemic Postconditioning in Hyperlipidemic Rats. Acta Biochim Biophys Sin 2014, 46, 112–118.
  34. Zhou, S.; Yi, T.; Liu, R.; Bian, C.; Qi, X.; He, X.; Wang, K.; Li, J.; Zhao, X.; Huang, C. Proteomics Identification of Annexin A2 as a Key Mediator in the Metastasis and Proangiogenesis of Endometrial Cells in Human Adenomyosis. Molecular & cellular proteomics 2012, 11, M112-017988.
  35. Bhattarai, D.; Xu, X.; Lee, K. Hypoxia-Inducible Factor-1 (HIF-1) Inhibitors from the Last Decade (2007 to 2016): A “Structure–Activity Relationship” Perspective. Medicinal research reviews 2018, 38, 1404–1442.
  36. Wang, Y.; Pu, L.; Li, Z.; Hu, X.; Jiang, L. Hypoxia-Inducible Factor-1α Gene Expression and Apoptosis in Ischemia-Reperfusion Injury: A Rat Model of Early-Stage Pressure Ulcer. Nurs Res 2016, 65, 35–46, doi:10.1097/NNR.0000000000000132.
  37. Zhang, H.; Bosch-Marce, M.; Shimoda, L.A.; Tan, Y.S.; Baek, J.H.; Wesley, J.B.; Gonzalez, F.J.; Semenza, G.L. Mitochondrial Autophagy Is an HIF-1-Dependent Adaptive Metabolic Response to Hypoxia. J Biol Chem 2008, 283, 10892–10903, doi:10.1074/jbc.M800102200.
  38. Semenza, G.L. Hypoxia-Inducible Factors: Coupling Glucose Metabolism and Redox Regulation with Induction of the Breast Cancer Stem Cell Phenotype. EMBO J 2017, 36, 252–259, doi:10.15252/embj.201695204.
  39. Ostádal, B.; Kolár, F.; Pelouch, V.; Bass, A.; Samánek, M.; Procházka, J. The Effect of Chronic Hypoxia on the Developing Cardiopulmonary System. Biomed Biochim Acta 1989, 48, S58-62.
  40. Asemu, G.; Papousek, F.; Ostádal, B.; Kolár, F. Adaptation to High Altitude Hypoxia Protects the Rat Heart against Ischemia-Induced Arrhythmias. Involvement of Mitochondrial K(ATP) Channel. J Mol Cell Cardiol 1999, 31, 1821–1831, doi:10.1006/jmcc.1999.1013.
  41. Chouabe, C.; Ricci, E.; Amsellem, J.; Blaineau, S.; Dalmaz, Y.; Favier, R.; Pequignot, J.-M.; Bonvallet, R. Effects of Aging on the Cardiac Remodeling Induced by Chronic High-Altitude Hypoxia in Rat. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2004, 287, H1246-1253, doi:10.1152/ajpheart.00199.2004.
  42. Ostadal, B.; Kolar, F. Cardiac Adaptation to Chronic High-Altitude Hypoxia: Beneficial and Adverse Effects. Respir Physiol Neurobiol 2007, 158, 224–236, doi:10.1016/j.resp.2007.03.005.
  43. Bu, H.; Yang, C.; Wang, M.; Ma, H.; Sun, H.; Zhang, Y. K(ATP) Channels and MPTP Are Involved in the Cardioprotection Bestowed by Chronic Intermittent Hypobaric Hypoxia in the Developing Rat. J Physiol Sci 2015, 65, 367–376, doi:10.1007/s12576-015-0376-5.
  44. Mallet, R.T.; Manukhina, E.B.; Ruelas, S.S.; Caffrey, J.L.; Downey, H.F. Cardioprotection by Intermittent Hypoxia Conditioning: Evidence, Mechanisms, and Therapeutic Potential. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 2018, 315, H216–H232, doi:10.1152/ajpheart.00060.2018.
  45. Magalhães, J.; Falcão-Pires, I.; Gonçalves, I.O.; Lumini-Oliveira, J.; Marques-Aleixo, I.; Dos Passos, E.; Rocha-Rodrigues, S.; Machado, N.G.; Moreira, A.C.; Miranda-Silva, D.; et al. Synergistic Impact of Endurance Training and Intermittent Hypobaric Hypoxia on Cardiac Function and Mitochondrial Energetic and Signaling. Int J Cardiol 2013, 168, 5363–5371, doi:10.1016/j.ijcard.2013.08.001.
  46. Magalhães, J.; Gonçalves, I.O.; Lumini-Oliveira, J.; Marques-Aleixo, I.; Passos, E.; Rocha-Rodrigues, S.; Machado, N.G.; Moreira, A.C.; Rizo, D.; Viscor, G.; et al. Modulation of Cardiac Mitochondrial Permeability Transition and Apoptotic Signaling by Endurance Training and Intermittent Hypobaric Hypoxia. Int J Cardiol 2014, 173, 40–45, doi:10.1016/j.ijcard.2014.02.011.
  47. Babenko, A.P.; Kazantseva, S.T.; Romanova, Y.V. The Mechanisms of Activation Of the ATP-Sensitive Potassium Channels of the Sarcolemma Of Cardiomyocytes In Hypoxia. In Proceedings of the Materials of the VII All-Russian Symposium on Ecological and Physiological Problems of Adaptation. M; 1994.
  48. Reynafarje, B.D.; Marticorena, E. Bioenergetics of the Heart at High Altitude: Environmental Hypoxia Imposes Profound Transformations on the Myocardial Process of ATP Synthesis. J Bioenerg Biomembr 2002, 34, 407–412, doi:10.1023/a:1022597523483.
  49. del Pilar Valle, M.; García-Godos, F.; Woolcott, O.O.; Marticorena, J.M.; Rodríguez, V.; Gutiérrez, I.; Fernández-Dávila, L.; Contreras, A.; Valdivia, L.; Robles, J.; et al. Improvement of Myocardial Perfusion in Coronary Patients after Intermittent Hypobaric Hypoxia. J Nucl Cardiol 2006, 13, 69–74, doi:10.1016/j.nuclcard.2005.11.008.
  50. Panisello, P.; Torrella, J.R.; Pagés, T.; Viscor, G. Capillary Supply and Fiber Morphometry in Rat Myocardium after Intermittent Exposure to Hypobaric Hypoxia. High Alt Med Biol 2007, 8, 322–330, doi:10.1089/ham.2007.1030.
  51. Serebrovskaya, T.V.; Swanson, R.J.; Kolesnikova, E.E. Intermittent Hypoxia: Mechanisms of Action and Some Applications to Bronchial Asthma Treatment. J Physiol Pharmacol 2003, 54 Suppl 1, 35–41.
  52. Levett, D.Z.; Radford, E.J.; Menassa, D.A.; Graber, E.F.; Morash, A.J.; Hoppeler, H.; Clarke, K.; Martin, D.S.; Ferguson-Smith, A.C.; Montgomery, H.E.; et al. Acclimatization of Skeletal Muscle Mitochondria to High-Altitude Hypoxia during an Ascent of Everest. FASEB J 2012, 26, 1431–1441, doi:10.1096/fj.11-197772.
  53. Simon, H.U.; Grotzer, M.; Nikolaizik, W.H.; Blaser, K.; Schöni, M.H. High Altitude Climate Therapy Reduces Peripheral Blood T Lymphocyte Activation, Eosinophilia, and Bronchial Obstruction in Children with House-Dust Mite Allergic Asthma. Pediatr Pulmonol 1994, 17, 304–311, doi:10.1002/ppul.1950170507.
  54. Ohta, A.; Diwanji, R.; Kini, R.; Subramanian, M.; Ohta, A.; Sitkovsky, M. In Vivo T Cell Activation in Lymphoid Tissues Is Inhibited in the Oxygen-Poor Microenvironment. Front Immunol 2011, 2, 27, doi:10.3389/fimmu.2011.00027.
  55. Oliver, S.J.; Macdonald, J.H.; Harper Smith, A.D.; Lawley, J.S.; Gallagher, C.A.; Di Felice, U.; Walsh, N.P. High Altitude Impairs in Vivo Immunity in Humans. High Alt Med Biol 2013, 14, 144–149, doi:10.1089/ham.2012.1070.
  56. Meehan, R.T. Immune Suppression at High Altitude. Ann Emerg Med 1987, 16, 974–979, doi:10.1016/s0196-0644(87)80743-6.
  57. Jung, W.-S.; Kim, S.-W.; Park, H.-Y. Interval Hypoxic Training Enhances Athletic Performance and Does Not Adversely Affect Immune Function in Middle- and Long-Distance Runners. International Journal of Environmental Research and Public Health 2020, 17, 1934, doi:10.3390/ijerph17061934.
  58. Gustafsson, M.V.; Zheng, X.; Pereira, T.; Gradin, K.; Jin, S.; Lundkvist, J.; Ruas, J.L.; Poellinger, L.; Lendahl, U.; Bondesson, M. Hypoxia Requires Notch Signaling to Maintain the Undifferentiated Cell State. Dev Cell 2005, 9, 617–628, doi:10.1016/j.devcel.2005.09.010.
  59. Zhang, K.; Zhao, T.; Huang, X.; Wu, L.; Wu, K.; Zhu, L.; Fan, M. Notch1 Mediates Postnatal Neurogenesis in Hippocampus Enhanced by Intermittent Hypoxia. Neurobiol Dis 2014, 64, 66–78, doi:10.1016/j.nbd.2013.12.010.
  60. Manukhina, E.B.; Goryacheva, A.V.; Pshennikova, M.G.; Malyshev, I.Y.; Mallet, R.T.; Downey, H.F. Protective Effects of Adaptation to Hypoxia in Experimental Alzheimer’s Disease. In Intermittent Hypoxia and Human Diseases; Springer, 2012; pp. 155–171.
  61. Belikova, M.V.; Kolesnikova, E.E.; Serebrovskaya, T.V. Intermittent Hypoxia and Experimental Parkinson’s Disease. In Intermittent Hypoxia and Human Diseases; Springer, 2012; pp. 147–153.
  62. Correia, S.C.; Moreira, P.I. Hypoxia-Inducible Factor 1: A New Hope to Counteract Neurodegeneration? J Neurochem 2010, 112, 1–12, doi:10.1111/j.1471-4159.2009.06443.x.
  63. Serebrovska, Z.O.; Serebrovska, T.V.; Kholin, V.A.; Tumanovska, L.V.; Shysh, A.M.; Pashevin, D.A.; Goncharov, S.V.; Stroy, D.; Grib, O.N.; Shatylo, V.B.; et al. Intermittent Hypoxia-Hyperoxia Training Improves Cognitive Function and Decreases Circulating Biomarkers of Alzheimer’s Disease in Patients with Mild Cognitive Impairment: A Pilot Study. Int J Mol Sci 2019, 20, E5405, doi:10.3390/ijms20215405.
  64. Schega, L.; Peter, B.; Törpel, A.; Mutschler, H.; Isermann, B.; Hamacher, D. Effects of Intermittent Hypoxia on Cognitive Performance and Quality of Life in Elderly Adults: A Pilot Study. Gerontology 2013, 59, 316–323, doi:10.1159/000350927.
  65. Hainsworth, R.; Drinkhill, M.J.; Rivera-Chira, M. The Autonomic Nervous System at High Altitude. Clin Auton Res 2007, 17, 13–19, doi:10.1007/s10286-006-0395-7.
  66. Kanai, M.; Nishihara, F.; Shiga, T.; Shimada, H.; Saito, S. Alterations in Autonomic Nervous Control of Heart Rate among Tourists at 2700 and 3700m above Sea Level. Wilderness & Environmental Medicine 2001, 12, 8–12, doi:10.1580/1080-6032(2001)012[0008:AIANCO]2.0.CO;2.
  67. Farinelli, C.C.; Kayser, B.; Binzoni, T.; Cerretelli, P.; Girardier, L. Autonomic Nervous Control of Heart Rate at Altitude (5050 m). Eur J Appl Physiol Occup Physiol 1994, 69, 502–507, doi:10.1007/BF00239867.
  68. Taralov, Z.; Terziyski, K.; Dimov, P.; Marinov, B.; Tarvainen, M.P.; Perini, R.; Kostianev, S. Assessment of the Acute Impact of Normobaric Hypoxia as a Part of an Intermittent Hypoxic Training on Heart Rate Variability. Cor et Vasa 2015, 57, e251–e256, doi:10.1016/j.crvasa.2015.05.010.
  69. Paralikar, S.J.; Paralikar, J.H. High-Altitude Medicine. Indian Journal of Occupational and Environmental Medicine 2010, 14, 6, doi:10.4103/0019-5278.64608.
  70. Peacock, A.J. Oxygen at High Altitude. BMJ 1998, 317, 1063–1066, doi:10.1136/bmj.317.7165.1063.
  71. BERNARDI, L.; PASSINO, C.; SPADACINI, G.; CALCIATI, A.; ROBERGS, R.; GREENE, R.; MARTIGNONI, E.; ANAND, I.; APPENZELLER, O. Cardiovascular Autonomic Modulation and Activity of Carotid Baroreceptors at Altitude. Clinical Science 1998, 95, 565–573, doi:10.1042/cs0950565.
  72. Marshall, J.M. Chemoreceptors and Cardiovascular Control in Acute and Chronic Systemic Hypoxia. Braz J Med Biol Res 1998, 31, 863–888, doi:10.1590/S0100-879X1998000700002.
  73. Bobyleva, O.V.; Glazachev, O.S. Changes in Autonomic Response and Resistance to Acute Graded Hypoxia during Intermittent Hypoxic Training. Hum Physiol 2007, 33, 199–206, doi:10.1134/S0362119707020107.
  74. T, B.; Kn, B. The Role of Vagal Neurocircuits in the Regulation of Nausea and Vomiting. European journal of pharmacology 2014, 722, doi:10.1016/j.ejphar.2013.08.047.
  75. Breit, S.; Kupferberg, A.; Rogler, G.; Hasler, G. Vagus Nerve as Modulator of the Brain-Gut Axis in Psychiatric and Inflammatory Disorders. Front Psychiatry 2018, 9, 44, doi:10.3389/fpsyt.2018.00044.
  76. LeBouef, T.; Yaker, Z.; Whited, L. Physiology, Autonomic Nervous System. In StatPearls; StatPearls Publishing: Treasure Island (FL), 2022.
  77. Aubert, A.E.; Seps, B.; Beckers, F. Heart Rate Variability in Athletes. Sports Med 2003, 33, 889–919, doi:10.2165/00007256-200333120-00003.
  78. Michael, S.; Graham, K.S.; Davis, G.M. Cardiac Autonomic Responses during Exercise and Post-Exercise Recovery Using Heart Rate Variability and Systolic Time Intervals-A Review. Front Physiol 2017, 8, 301, doi:10.3389/fphys.2017.00301.
  79. Buchheit, M.; Papelier, Y.; Laursen, P.B.; Ahmaidi, S. Noninvasive Assessment of Cardiac Parasympathetic Function: Postexercise Heart Rate Recovery or Heart Rate Variability? Am J Physiol Heart Circ Physiol 2007, 293, H8-10, doi:10.1152/ajpheart.00335.2007.
  80. Cipryan, L. The Effect of Fitness Level on Cardiac Autonomic Regulation, IL-6, Total Antioxidant Capacity, and Muscle Damage Responses to a Single Bout of High-Intensity Interval Training. J Sport Health Sci 2018, 7, 363–371, doi:10.1016/j.jshs.2016.11.001.
  81. Dixon, E.M.; Kamath, M.V.; McCartney, N.; Fallen, E.L. Neural Regulation of Heart Rate Variability in Endurance Athletes and Sedentary Controls. Cardiovasc Res 1992, 26, 713–719, doi:10.1093/cvr/26.7.713.
  82. Stanley, J.; Peake, J.M.; Buchheit, M. Cardiac Parasympathetic Reactivation Following Exercise: Implications for Training Prescription. Sports Med 2013, 43, 1259–1277, doi:10.1007/s40279-013-0083-4.
  83. Seiler, S.; Haugen, O.; Kuffel, E. Autonomic Recovery after Exercise in Trained Athletes: Intensity and Duration Effects. Med Sci Sports Exerc 2007, 39, 1366–1373, doi:10.1249/mss.0b013e318060f17d.
  84. Korobeynikov, G.; Korobeynikova, L.; Potop, V.; Nikonorov, D.; Semenenko, V.; Dakal, N.; Mischuk, D. Heart Rate Variability System in Elite Athletes with Different Levels of Stress Resistance. Journal of Physical Education and Sport 2018, 18, 550–554.
  85. Barbas, I.; Fatouros, I.G.; Douroudos, I.I.; Chatzinikolaou, A.; Michailidis, Y.; Draganidis, D.; Jamurtas, A.Z.; Nikolaidis, M.G.; Parotsidis, C.; Theodorou, A.A.; et al. Physiological and Performance Adaptations of Elite Greco-Roman Wrestlers during a One-Day Tournament. Eur J Appl Physiol 2011, 111, 1421–1436, doi:10.1007/s00421-010-1761-7.
  86. Vladimir, P. Assessment of Physical and Technical Training Level in Basic Specialization Stage in Women’s Artistic Gymnastics. Journal of physical education and sport 2013, 13, 114.
  87. Laborde, S.; Mosley, E.; Mertgen, A. Vagal Tank Theory: The Three Rs of Cardiac Vagal Control Functioning - Resting, Reactivity, and Recovery. Front Neurosci 2018, 12, 458, doi:10.3389/fnins.2018.00458.
  88. Hottenrott, L.; Ketelhut, S.; Hottenrott, K. Commentary: Vagal Tank Theory: The Three Rs of Cardiac Vagal Control Functioning - Resting, Reactivity, and Recovery. Front Neurosci 2019, 13, 1300, doi:10.3389/fnins.2019.01300.
  89. Porges, S.W. The Polyvagal Perspective. Biol Psychol 2007, 74, 116–143, doi:10.1016/j.biopsycho.2006.06.009.
  90. Thayer, J.F.; Ahs, F.; Fredrikson, M.; Sollers, J.J.; Wager, T.D. A Meta-Analysis of Heart Rate Variability and Neuroimaging Studies: Implications for Heart Rate Variability as a Marker of Stress and Health. Neurosci Biobehav Rev 2012, 36, 747–756, doi:10.1016/j.neubiorev.2011.11.009.
  91. Lehrer, P.; Kaur, K.; Sharma, A.; Shah, K.; Huseby, R.; Bhavsar, J.; Sgobba, P.; Zhang, Y. Heart Rate Variability Biofeedback Improves Emotional and Physical Health and Performance: A Systematic Review and Meta Analysis. Applied Psychophysiology and Biofeedback 2020, 45, 109–129.
  92. Peçanha, T.; Bartels, R.; Brito, L.C.; Paula-Ribeiro, M.; Oliveira, R.S.; Goldberger, J.J. Methods of Assessment of the Post-Exercise Cardiac Autonomic Recovery: A Methodological Review. Int J Cardiol 2017, 227, 795–802, doi:10.1016/j.ijcard.2016.10.057.
  93. Perez-Gaido, M.; Lalanza, J.F.; Parrado, E.; Capdevila, L. Can HRV Biofeedback Improve Short-Term Effort Recovery? Implications for Intermittent Load Sports. Appl Psychophysiol Biofeedback 2021, 46, 215–226, doi:10.1007/s10484-020-09495-8.
  94. Semenza, G.L.; Shimoda, L.A.; Prabhakar, N.R. Regulation of Gene Expression by HIF-1. Novartis Found Symp 2006, 272, 2–8; discussion 8-14, 33–36.
  95. Vogt, M.; Puntschart, A.; Geiser, J.; Zuleger, C.; Billeter, R.; Hoppeler, H. Molecular Adaptations in Human Skeletal Muscle to Endurance Training under Simulated Hypoxic Conditions. J Appl Physiol (1985) 2001, 91, 173–182, doi:10.1152/jappl.2001.91.1.173.
  96. Brocherie, F.; Millet, G.P.; D’Hulst, G.; Van Thienen, R.; Deldicque, L.; Girard, O. Repeated Maximal-Intensity Hypoxic Exercise Superimposed to Hypoxic Residence Boosts Skeletal Muscle Transcriptional Responses in Elite Team-Sport Athletes. Acta Physiol (Oxf) 2018, 222, doi:10.1111/apha.12851.
  97. Girard, O.; Brocherie, F.; Goods, P.S.R.; Millet, G.P. An Updated Panorama of “Living Low-Training High” Altitude/Hypoxic Methods. Frontiers in Sports and Active Living 2020, 2.
  98. Finaud, J.; Lac, G.; Filaire, E. Oxidative Stress : Relationship with Exercise and Training. Sports Med 2006, 36, 327–358, doi:10.2165/00007256-200636040-00004.
  99. Venter, R.E. Role of Sleep in Performance and Recovery of Athletes: A Review Article. South African Journal for Research in Sport, Physical Education and Recreation 2012, 34, 167–184.
  100. Walsh, N.P.; Halson, S.L.; Sargent, C.; Roach, G.D.; Nédélec, M.; Gupta, L.; Leeder, J.; Fullagar, H.H.; Coutts, A.J.; Edwards, B.J.; et al. Sleep and the Athlete: Narrative Review and 2021 Expert Consensus Recommendations. Br J Sports Med 2020, bjsports-2020-102025, doi:10.1136/bjsports-2020-102025.
  101. Nédélec, M.; Halson, S.; Abaidia, A.-E.; Ahmaidi, S.; Dupont, G. Stress, Sleep and Recovery in Elite Soccer: A Critical Review of the Literature. Sports Med 2015, 45, 1387–1400, doi:10.1007/s40279-015-0358-z.
  102. Fullagar, H.H.K.; Skorski, S.; Duffield, R.; Julian, R.; Bartlett, J.; Meyer, T. Impaired Sleep and Recovery after Night Matches in Elite Football Players. J Sports Sci 2016, 34, 1333–1339, doi:10.1080/02640414.2015.1135249.
  103. Swinbourne, R.; Gill, N.; Vaile, J.; Smart, D. Prevalence of Poor Sleep Quality, Sleepiness and Obstructive Sleep Apnoea Risk Factors in Athletes. Eur J Sport Sci 2016, 16, 850–858, doi:10.1080/17461391.2015.1120781.
  104. Carriço, S.; Skorski, S.; Duffield, R.; Mendes, B.; Calvete, F.; Meyer, T. Post-Match Sleeping Behavior Based on Match Scheduling over a Season in Elite Football Players. Science and Medicine in Football 2018, 2, 9–15.

Lesen Sie auch

long covid und fibromyalgie

Chronische Muskelschmerzen, Fatigue und vielfältige körperliche Beschwerden gehören zu den häufig berichteten Langzeitfolgen einer SARS-CoV-2-Infektion. Die Ähnlichkeit zum Fibromyalgiesyndrom wirft die Frage auf, ob beide Erkrankungen gemeinsame biologische Mechanismen besitzen. Eine wissenschaftliche Hypothesenarbeit von Plaut (2023) stellt einen neuen Erklärungsansatz vor: Demnach könnten Veränderungen der Faszien und eine übermäßige Aktivität bestimmter Bindegewebszellen zur Entstehung chronischer Schmerzen beitragen.

fibromyalgie nach virusinfektionen

Chronische Muskelschmerzen, ausgeprägte Erschöpfung und kognitive Beeinträchtigungen können auch nach einer zunächst mild verlaufenden Virusinfektion auftreten. Besonders seit der COVID-19-Pandemie rückt die Frage in den Fokus, ob Infektionen die Entstehung einer Fibromyalgie begünstigen können. Eine umfangreiche Übersichtsarbeit von Plaut (2026) analysiert die wissenschaftliche Evidenz zu diesem Zusammenhang und diskutiert neue Erklärungsansätze, die neben dem Nervensystem auch das Muskel- und Bindegewebe einbeziehen.

papain neue erkenntnisse zur entzündungshemmenden wirkung

Papain ist ein pflanzliches Enzym aus der Papaya, das vor allem für seine eiweißspaltenden Eigenschaften bekannt ist. Neue Forschungsergebnisse deuten darauf hin, dass Papain darüber hinaus entzündliche Prozesse auf zellulärer Ebene beeinflussen könnte. Eine experimentelle Studie von Jiang et al. (2022) untersuchte die Wirkung auf bestimmte Immunzellen und identifizierte einen möglichen Mechanismus, der insbesondere im Zusammenhang mit chronischen Gefäßentzündungen von Interesse ist.

langes sitzen unabhängiger risikofaktor

Sitzen nimmt in modernen Gesellschaften einen erheblichen Teil des Tages ein. Büroarbeit, Autofahrten und Bildschirmzeiten führen dazu, dass viele Menschen mehrere Stunden täglich nahezu ohne Muskelaktivität verbringen. Dabei ist langes Sitzen nicht einfach das Gegenteil von Sport: Eine Person kann die Empfehlungen für körperliche Aktivität erfüllen und gleichzeitig einen großen Teil des restlichen Tages sitzend verbringen.
Welche gesundheitlichen Folgen damit verbunden sind, untersuchten Patterson et al. (2018) in einer umfangreichen systematischen Übersichtsarbeit mit Dosis-Wirkungs-Metaanalyse. Eingeschlossen wurden 34 prospektive Studien mit insgesamt 1.331.468 Teilnehmern und einer durchschnittlichen Beobachtungsdauer von 8,9 Jahren. Analysiert wurden die Zusammenhänge zwischen der täglichen Sitzzeit beziehungsweise der Zeit vor dem Fernseher und Gesamtmortalität, kardiovaskulärer Mortalität, Krebsmortalität sowie dem Neuauftreten eines Typ-2-Diabetes.

alkoholkonsum und brustkrebs

Alkoholkonsum gilt als etablierter Risikofaktor für verschiedene Krebserkrankungen. Ethanol und sein Stoffwechselprodukt Acetaldehyd werden von der International Agency for Research on Cancer als Humankarzinogene der Gruppe 1 eingestuft. Auch der kausale Zusammenhang zwischen alkoholischen Getränken und Brustkrebs bei Frauen ist seit Jahren bekannt. Weniger eindeutig war bislang jedoch, wie stark bereits geringe Alkoholmengen das Risiko beeinflussen und ob sich die Zusammenhänge je nach Menopausen- oder Rezeptorstatus unterscheiden.

Eine aktuelle systematische Übersichtsarbeit und Meta-Analyse von Sohi et al. (2024) wertete deshalb die verfügbare Evidenz aus prospektiven Kohortenstudien detailliert aus. Neben der durchschnittlichen Alkoholmenge untersuchten die Autoren auch episodisch hohen Konsum, den Zeitpunkt des ersten Alkoholkonsums sowie Unterschiede zwischen prä- und postmenopausalen Frauen und verschiedenen molekularen Brustkrebstypen.

lipödem mehr als eine fettgewebserkrankung

Das Lipödem wird bislang vor allem als Erkrankung des Fettgewebes betrachtet. Charakteristisch sind eine symmetrische, disproportionierte Vermehrung des subkutanen Fettgewebes, insbesondere an Beinen und häufig auch Armen, Schmerzen, Ödeme und eine geringe Reaktion des betroffenen Fettgewebes auf konventionelle Maßnahmen zur Gewichtsreduktion.

Eine aktuelle Übersichtsarbeit von Viana et al. (2026) erweitert diese Sichtweise: Die Autoren stellen die Hypothese auf, dass bei fortgeschrittenem Lipödem nicht nur das Fettgewebe, sondern zunehmend auch die Skelettmuskulatur funktionell beeinträchtigt sein könnte. Als mögliche Verbindung zwischen beiden Geweben rückt dabei die entzündliche Myosteatose – die Einlagerung von Fett in die Muskulatur in einem entzündlichen Milieu – in den Fokus.

Simply fill out the form. You will receive the 16-page special edition immediately by e-mail free of charge.

Füllen Sie einfach das Formular aus.

Sie erhalten den Sonderdruck in wenigen Minuten per E-Mail.

Anforderung Sonderdruck Silberlinde

Füllen Sie einfach das Formular aus.

Sie erhalten den Sonderdruck in wenigen Minuten per E-Mail.

Anforderung Sonderdruck Erkältungskrankheiten

Füllen Sie einfach das Formular aus.

Sie erhalten den Sonderdruck in wenigen Minuten per E-Mail.

Sonderdruck IHHT